Coccoidea

Coccoidea
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 Dactylopius coccus
Dactylopius coccus
Classification
Règne Animalia
Embranchement Arthropoda
Sous-embr. Hexapoda
Classe Insecta
Sous-classe Pterygota
Infra-classe Neoptera
Super-ordre Endopterygota
Ordre Hemiptera
Sous-ordre Sternorrhyncha
Super-famille
Coccoidea
Handlirsch, 1903
Cochenille sur un citronnier, et son ovisac crénelé

Cochenille sur un citronnier, et son ovisac crénelé

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Les cochenilles (Coccoidea) forment une superfamille d'insectes hémiptères sternorrhynches.

On en compte près de 8 500 espèces [1],[2]réunies en 21 à 24 familles. Elles vivent dans une grande variété d'Habitats ; des toundras (environ 2 000 espèces connues en zone paléarctique[2]) jusqu'à l'équateur. Ces insectes étaient autrefois nommés « poux des plantes » en raison de leurs pièces buccales transformées en rostre piqueur leur permettant d’aspirer la sève, soit de la sève élaborée pour certains groupes, aspirée dans le phloème, soit de la sève brute prélevée dans le xylème, alors que quelques espèces aspirent les liquides des parenchymes cellulaires[2]. Celles qui vivent en zones tropicales chaudes sont plus grandes que celles des zones tempérées. Les femelles produisent généralement une grande quantité de sécrétions tégumentaires (cires ou laques) qui les protègent et parfois les recouvrent complètement[2].
Les Coccoidea se nourrissent d'une large variété de plantes, si bien que la plupart d'entre eux sont considérés comme nuisibles.
Les cochenilles sont des insectes communs, ou devenus communs, voire localement invasifs, mais dont l’écologie reste mal connue.

Sommaire

Histoire évolutive

Pullulation de cochenille sur le tronc d'un jeune tilleul (nord de la France)
Détail de la photo précédente, avec femelles à plusieurs stades de croissance
Aulacaspis rosae (mâle)
Planococcus citri
Cochenille noire de l'olivier (Saissetia oleae)
Cochenille, et fumagine sur eucalyptus
Cochenilles sur un Opuntia cactus, à La Palma
"Amérindien Collectant des cochenilles avec un pinceau en "queue de cerf" par José Antonio de Alzate y Ramírez (1777)
Dactylopius coccus, originaire d'Amérique centrale, dont on tire un colorant (E 120)
Cochenilles sur marronnier d'Inde

Dans l'histoire de l'évolution, les cochenilles semblent apparaître vers le milieu du Mésozoïque (il y a 140 millions d'années). Elles faisaient probablement partie de la faune de la litière et on suppose qu'elles mangeaient des mycéliums. Certains groupes de Margarodidés (insectes de 10 à 15 mm) étaient déjà diversifiés au Crétacé inférieur (-100 millions d'années). Les cochenilles seraient devenues parasites des plantes à fleur en co-évoluant avec certaines d'entre elles. Souvent, les cochenilles ont développé des relations de mutualisme avec des fourmis, ainsi qu'avec des microorganismes devenus leurs symbiontes et produisant pour elles des substances azotées indispensables. Les inclusions d'ambre du Tertiaire (Eocène, Oligocène et Miocène) (-55 millions d'années) ont conservé des représentants de presque tous les groupes existant aujourd'hui [2].

Classification

Le groupe des cochenilles (Coccidés), regroupe des hémiptères du sous-ordre des Sternorhynques. C'est un groupe monophylétique, l'un des 4 groupes frères des Sternorrhynches (les 3 autres étant les pucerons (Aphidoidea), les Aleurodes (Aleyrodoidea) et les psylles (Psylloidea))[2].

Description

Apparence : Les cochenilles sont toutes des parasites des végétaux, à fort dimorphisme sexuel. Le mâle adulte est un insecte ailé ne possédant qu'une paire d'ailes antérieures. Ses ailes postérieures sont réduites à des structures nommées hamulohaltères, des antennes et des pattes (tarses uni-articulés) développées. Il n'a pas de pièces buccales et ne vit qu'un à deux jours, le temps de se reproduire. Chez la plupart des familles de cochenilles, la femelle est aptère, à l'aspect néoténique et peut avoir des antennes et pattes réduites (beaucoup vivent fixées sur des végétaux). La femelle ressemble à une larve en forme d'écaille, de galle ou couverte de cire[3], alors que d'autres familles comme les Diaspididae peuvent avoir une disparition totale des pattes chez la femelle adulte, pour rester complètement fixée sur la plante.

Taille : En zone tempérée, elles ne mesurent au mieux que quelques mm, mais des espèces du genre Callipappus atteignent 40 mm de long. En Afrique, Aspidoproctus maximus Lounsbury, 1908 mesure jusqu'à 35 mm de long et 20 mm de largeur.

Certaines cochenilles sécrètent une matière d’apparence cotonneuse, constituée de fins filaments cireux ou d’écailles cireuses. Certaines espèces ont une salive toxique : lorsque la plante est parasitée par un nombre important de cochenilles, on peut voir apparaitre sur les feuilles des taches noires correspondant aux toxines qui s'accumulent jusqu'à créer une petite lésion : la feuille finit par dépérir peu après (elle tombe, se recroqueville, jaunit ou se nécrose, selon les espèces).

Pour certaines espèces très petites (difficile à observer et à remarquer sur la plante), on peut déceler leur présence au niveau des jeunes feuilles : les cochenilles se fixent sur la jeune feuille en émergence, profitant d'une arrivée constante de sève, et d'un matériel plus tendre, donc plus facile à percer. La conséquence est un sous-développement de la nouvelle feuille au niveau de la piqûre. Tout autour de celle-ci, la feuille est beaucoup moins développée et peu apparaitre légèrement difforme, à cause de la dissymétrie engendrée par le manque local de sève [ref?]. On peut vérifier s'il s'agit bien de cochenilles en laissant la feuille sur la plante (durant quelques jours où quelques semaines, selon la vitesse de développement de la plante) : l'insecte va se nourrir de manière quasi continue, produisant son bouclier de cire : cela se traduira par une fine couche (en général brun clair) présente tout autour de l'encoche. En grattant doucement, vous décollerez en un seul coup l'intégralité de cette petite plaque fine (sinon, c'est peut-être qu'il y en a deux toutes proches l'une de l'autre). Avec une très bonne loupe ou un petit microscope amateur, en observant la partie de la plaque collée à la feuille, vous retrouverez près de son centre les membres de l'insecte qui lui permettait de rester fixer fermement attachés à la plante. [ce §, qui ne concerne que certaines cochenilles, est digne d'un magazine grand public, pas d'une encyclopédie]

Reproduction et cycle de vie

Le système de reproduction au sein de ce groupe est très hétérogène.

Les cochenilles sont presque toujours ovipares mais certaines espèces sont ovovivipares (les œufs pondus sont déjà embryonnés), et d'autres sont vivipares [2].

L'hermaphrodisme est possible, par exemple chez certaines espèces du genre Icerya (Monophlebidés) (Chez ces espèces, dont la Cochenille australienne, chaque individu porte à la fois des organes reproducteurs mâles et femelles). L’œuf fécondé produit un hermaphrodite, et celui qui échapperait à l'autofécondation (phénomène rare) produira (par parthénogenèse arrhénotoque) un mâle ailé[2].
On connait aussi au moins sept formes de parthénogenèse chez les cochenilles. [ref?]
Plusieurs de ces modes de reproduction peuvent coexister au sein d'une même espèce, produisant alors à la fois des lignées parthénogénétiques et bisexuées (C'est le cas en France par exemple pour la Lécanine du cornouiller, la Lécanine de la vigne, le Pou des Hespérides ou le Cochenille virgule du pommier[2].

La parthénogenèse consiste en développement d'œuf non fécondés ; elle peut être de 3 types[2]:

- thélytoque (les oeufs non fécondés ne produisent que des femelles) ; c'est toujours le cas chez quelques Diaspididés et Margarodidés ;
- facultatif facultatif (les œufs non fécondés produisent des femelles, mais la reproduction bisexuée donne des individus des deux sexes) ;
- arrhénotoque (de l'œuf non fécondé ne sortent que des mâles)

La fécondation : À l'émergence, les mâles sexuellement mûrs partent à la recherche des femelles, guidés par les phéromones femelles. Ils s'accouplent en quelques minutes. Souvent plusieurs mâles peuvent être observés sur une même femelle, s'accouplant les uns après les autres[2].

Les cochenilles connaissent trois principaux stades de développement[2] :

  • l'œuf ;
  • la larve femelle est mobile, avec 3 ou 4 stades larvaires L1, L2 et L3 et éventuellement L4) ; la femelle a un développement post-embryonnaire dit paramétabolique (sans métamorphose, avec des larves ressemblant plus ou moins à des adultes miniatures, pour leur forme autant que pour leur mode de vie).
  • le mâle passe par 5 stades ; 1er et 2e stades larvaires, puis stades “prénymphe”, “nymphe” et adulte.
    Au contraire de la femelle, le mâle connait un développement post-embryonnaire holométabole.
  • l’adulte (La femelle, le plus souvent fixée, pond de nombreux œufs très petits, déposés sous ou derrière elle, dans un coussinet de cire blanche)

Le nombre de générations par an varie selon l’espèce et le climat. L'espèce est dite univoltine quand elle ne produit qu'une génération par an et bi-, tri- ou poly-voltine quand elle en produit plusieurs.

Fécondité [2] : Elle diffère selon les espèces et les contextes (par ex. selon le taux de parasitisme) ;

  • Les Parlatoria (Diaspididés) ne pondent que 15 à 20 œufs par femelle.
  • Au contraire, les Eulecanium et Saissetia (comme la Cochenille noire de l’olivier) pondent jusqu'à 2 000 oeufs par femelle, mais les Aspidoproctus (Monophlebidés) peuvent en pondre 3 fois plus (jusqu'à environ 6000)

Mobilité

Le mâle est ailé et vole. A l'état adulte, la femelle n'est pas mobile, sauf chez les Pseudococcidae, et se nourrit en se fixant sur les tiges ou les feuilles de certaines plantes dont elle suce la sève. Certaines familles peuvent avoir des cochenilles femelles avec des appendices développés tels que chez les Ortheziidae [3], alors que d'autres familles comme les Diaspididae peuvent avoir une disparition totale des pattes chez la femelle adulte, pour rester complètement fixée sur la plante.
C'est au stade de larve que cet animal se disperse et colonise de nouveaux arbres, d'autres plantes ou de nouvelles parties de sa plante hôte... Certaines larve au 1er stade se déplacent activement (c'est le cas par exemple pour la Cochenille blanche du palmier-dattier (Parlatoria blanchardi Targioni Tozzetti, 1868). Certaines se laissent emporter par le vent ou sont transportées par des fourmis qui les approchent de leur colonies pour récolter leur miellat. Au second stade, dans certaines familles (Coccidés, Kermesidés), les larves se fixent définitivement (jusqu'à leur mort par exemple pour les Diaspididés femelles, ou jusqu'à la mue imaginale pour le mâle). Beaucoup d'espèces sont encore mobiles au second stade. Dans quelques familles, la femelle reste mobile toute sa vie (Pseudococcidés, Ortheziidés).

Mécanismes d'adaptation, défense et protection[2]

Ils sont nombreux, et probablement encore imparfaitement compris

  • Certaines espèces ont développé des symbioses avec les fourmis qui les défendent en échange de leur miellat.
  • Les boucliers (jouant parfois un rôle de camouflage) et les protections cireuses les protègent de certains prédateurs et de la déshydradation
  • Les femelles se positionnent sur des parties des plantes où elles sont mieux cachées, ou là où elles peuvent profiter du ruissellement des eaux de pluies.
  • Quelques genres Kuwania, Xylococcus, Matsucoccus (dont la Cochenille du pin maritime) se protègent dans la plante (sous les écorces, dans les gaines foliaires ou dans les noœuds de graminées ou sur des racines non visibles.
  • Les Eriococcidés se protègent dans un sac qu'elles construisent au fur et à mesure de leur croissance. Les cochenilles Diaspines recyclent leurs exuvies dans leur bouclier protecteur, élaboré à partir de sécrétions cimentées par le liquide anal.
  • Les larves de certaines espèces hypogées (de la famille des Margarodidés]) peuvent en cas de stress hydrique retarder leur mue imaginale, se protéger sous un test étanche qu'elles élaborent au moyen de leurs sécrétions, pour y survivre le temps que les conditions extérieures redeviennent plus clémentes.
  • Des stratégies variées de protection des œufs et jeunes larves existent ; ce sont les ovisac solides et structuré de la Cochenille australienne ou des Pulvinaria, ou des tapis de filaments cireux enchevêtrés par le femelle ''Porphyrophora''. Chez les Ortheziidés, les femelles mobiles transportent leur ovisac. Les femelles d'autres espèces (Kermesidés et beaucoup de Coccidés) protègent leurs œufs sous leur bouclier ou sous leurs corps. En Australie, les femelles du genre Callipappus génèrent une poche 'marsupiale' en invaginant leurs segments abdominaux postérieurs et y pondent directement. Les jeunes larves y grandiront. Le genre Apiomorpha crée des galles sur les eucalyptus (tumeurs creuse de la plante provoquées en particulier par l’injection de salive) et les larves s'y développent protégées de leurs prédateurs.

Parasitisme

Ce sont des parasites qui tuent rarement leurs hôtes, mais qui peuvent poser problème en agriculture, horticulture, sylviculture et dans les vergers. En France, environ 110 espèces sont occasionnellement nuisibles et quelques espèces sont considérées comme ravageuses (ce sont surtout des Diaspididés, Coccidés, Pseudococcidés ou Margarodidés).

  • Certaines infestations d'arbres, rameaux et feuilles par des cochenilles sont en train de devenir caractéristiques des milieux urbains ou très anthropisés. On les trouve aussi parfois sur ou sous des objets adjacents (ex : les colliers qui lient l’arbre aux tuteurs).
  • Quand ils sont nombreux sur les feuilles ou tiges, ces insectes peuvent faire des ravages sur les arbres fruitiers et en particulier les pommiers.
  • La Cochenille du pin maritime a peut-être été favorisée par les monocultures de pins et le recul de ses prédateurs (ex : la punaise Elatophilus nigricornis Zetterstedt est un Anthocoridé prédateur spécialiste de cette espèce, utilisé en lutte intégrée). Elle a tué les pins maritimes sur environ 120 000 ha dans le Var et les Alpes-Maritimes et elle colonise la Corse[4].
  • Le Pou de San José, polyphage affaiblit les arbres et arbustes fruitiers.
  • La Cochenille du mûrier s'attaque aux pêchers de vergers. On peut la combattre au moyen de la lutte biologique avec un de ses prédateurs (Hyménoptère endoparasite), Encarsia berlesei (Howard, 1906), ainsi que par l'hyménoptère ectoparasite Aphytis proclia (Walker, 1839) ou une petite coccinelle ''Rhizobius satelles'' (Blaisd) [5].
  • Une espèce s'attaque aux herbacées graminées, c'est Antonina graminis qui peut faire jaunir des taches de gazon de golf [ref?].
  • une dizaine d'espèces sont observées sur la vigne, quelques espèces devenant parfois localement et momentanément nuisibles ; cochenille floconneuse de la vigne (Pulvinaria vitis L.), floconneuse de l'érable (Neopulvinaria innumerabilis (Rathvon), Lécanine du cornouiller, (Parthenolecanium corni Bouché), cochenille farineuse du citronnier (Planococcus citri Risso), avec en cas de larges pullulations des pertes importantes. Elles peuvent transmettre des maladies dont les « virus de l'enroulement » de la vigne (transmis selon l'INRA par la Cochenille bohémienne (Heliococcus bohemicus), la Cochenille du platane (Phenacoccus aceris) et la Lécanine du cornouiller (Parthenolecanium corni Bouché)).

Pour les infestations très locales, des alternatives[6] aux pesticides toxiques sont le nettoyage à l'eau sous pression, la pulvérisation d'une solution de savon noir avec 1 % d'alcool à brûler ou un peu d'huile de soja. Favoriser la présence et la survie de coccinelles sauvages, de syrphes et de leurs larves, ainsi que d'une grande richesse en insectes et oiseaux (en particulier ceux qui mangent les fourmis qui protègent les pucerons et cochenilles) permet aussi d'éviter les pullulations.

Répartition

Les introductions par l'homme et la mondialisation des échanges de plantes a bouleversé la répartition de certaines espèces. On en a par exemple dénombré 159 espèces en Sicile dont près de la moitié au moins sont des parasites des cultures récemment introduits. On en compte 343 en Italie. Les mieux connues sont celles qui parasitent les espèces cultivées.

Ils sont réputés peu mobiles et donc à faible risque de dissémination. Ils sont pourtant en Europe en pleine expansion, notamment sur les arbres urbains stressés par la pollution ou le contexte urbain et peut-être via les transports de plants parasités. Les petites larves semblent pouvoir être transportées par le vent.

Pullulations

Les pullulations de cochenilles hors de leur milieux naturel (en climat urbain et périurbain notamment) sont de plus en plus fréquentes, sur tous les continents, et elles sont mal comprises.
Plusieurs facteurs semblent pourvoir les favoriser, allant d'une moindre défense de l'arbre ou de la plante parasitée (suite à un manque d’eau, l'exposition à certains polluants urbains, la présence d'un couple thermo-hygrométrique anormal..).
Une explication essentielle semble être la régression ou disparition des prédateurs naturels des cochenilles (notamment en ville) ; avec en particulier

  • certaines espèces de coccinelles et leurs larves,
  • les larves de Syrphidés,
  • les chenilles de Pyralidés
  • les micro-hyménoptères (Chalcidiens et Braconidés) qui parasitent et contrôlent les cochenilles dans la nature.

Ces parasites des cochenilles semblent fortement régresser et ont souvent localement disparu. L'augmentation générale du taux de pesticides et de certaines polluants dans l'air, les pluies, les brumes ou rosées pourraient être en cause.

Ennemis naturels

Leur principaux ennemis (voir ci-dessus), dont certaines espèces de coccinelles prédatrices et de micro-hyménoptères parasites semblent en voie de forte régression.
Certaines guêpes ou les fourmis sont réputées les épargner et consommer leur miellat, mais divers hyménoptères dont Metaphycus helvolus ou Metaphycus lounsburyi parasitent les stades larvaires ou à l’adulte.
Diversinervus elegans parasite l’adulte ou la larve[7]. Quelques prédateurs de cet insecte ont été utilisés en lutte biologique, dont par exemple Chilicorus renipustulatus et Chilicorus nigritus, deux petites coccinelles qui se nourrissent de diverses espèces de cochenilles (diaspines et lécanines).

Pathogénicité

Comme tous les insectes piqueurs-suceurs, ces espèces (notamment introduites) sont potentiellement dangereuses pour les plantes, à cause de leur ponction de sève, du rejet de miellat qui peut provoquer des fumagines, et du fait des virus qu'elles peuvent contribuer à introduire dans la sève ou les tissus qu'elles perforent, mais aussi en raison de l'absence de prédateur spécifique dans le pays d'accueil.
Les larves ou œufs ou individus adultes sont supposés fréquemment introduits ailleurs que dans leurs zone d'origine avec les transports à longue distance de plantes vertes, arbres de pépinières, fruits et légumes.

Traitements horticoles

Le bouclier ou les fibres cireuses qui protègent ces insectes et leurs œufs les rendent moins vulnérables aux pesticides externes. Les solutions aqueuses leur glissent dessus si l'on n'y ajoute pas d'agents mouillants (savon noir, liquide vaisselle...). On utilise parfois directement des huiles insecticides. Un autre moyen efficace (mais favorisant l'apparition de formes résistantes) est l'utilisation de pesticides systémiques (substances pénétrant la plante et empoisonnant l'insecte suceur via la sève, dans toutes les partie de la plante, y compris racines. Du fait des œufs, il faut retraiter une semaine à 10 j après contre larves écloses dans l'intervalle.
. Il faut traiter toutes les plantes concernées et en cas de récidive examiner d'éventuelles sources de recontamination dont certaines plantes adventices.

Intérêt économique ou culinaire

Certaines espèces ont joué un rôle économique, qui a décliné depuis l'invention des substances de synthèse.
La cochenille est utilisable[8] pour produire :

  • des laques, comme le shellac issu de l'espèce Kerria lacca qui parasite le jujubier (Zizyphus mauritiana, le kussam ( Schleichera oleosa), le palas (Butea monosperma), le ghont (Zizyphus xyloporus) ou le figuier des pagodes (Ficus religiosa). Son extrait est utilisé pour fabriquer des dragées pharmaceutiques, l'enrobage de certains chocolats "qui ne fondent pas dans la main" et autrefois parmi les premières matières plastiques (premiers disques 78 tours) ;
  • du carmin ou rouge écarlate produit depuis l'antiquité [9] à partir de cochenille Dactylopius coccus dite Kermès des teinturiers ou “graines écarlates ”, vivant sur le chêne kermès en Espagne et autour de la Méditerranée. La matière colorante est constituée d'acide kermésique (pigment du type anthraquinone, et d'acide laccaïque qu'on a détecté sur des momies égyptiennes et même dans certaines peintures préhistoriques. ce colorant a été utilisé comme remède jusqu’au XVIIIe siècle (astringent pour les plaies décongestionnant pour les yeux). F. Silvestri estime même que l'extrait de cette cochenille a été la Confectio Alkermes le médicament le plus prescrit aux VIIIe et IXe siècles.
    l'Alkermes est une boisson italienne encore fabriquée avec cette cochenille.
  • En Amérique centrale et du sud (Mexique, Pérou), on tire de Dactylopius coccus Costa, 1835, alimentée par le figuier de Barbarie (Opuntia ficus-indica), un carmin rouge cramoisi constitué d'acide carminique pur (anthraquinone résistante au lavage). 70 000 cochenilles produisent 500 g de carmin.
    Il a été utilisé pour teindre les tissus, la peau, des poteries ou comme colorant alimentaire, depuis au moins 400 avant J.-C. Les envahisseurs espagnols ont élevé en secret ces cochenilles, entre autres à Malaga, et dès 1626 aux îles Canaries (dans des "nopaleries"). La Cochenille de Pologne et la Cochenille d'Arménie produisent aussi un colorant rouge.
    Les colorants chimiques de synthèse ont concurrencé cette production à partir des années 1850, mais elle se poursuit au Pérou comme colorant alimentaire ou pour l'histologie(« carmin n° 40 pour histologie ».
  • Les Aztèques, Incas et Mayas extrayaient un rouge carmin et l'aje à partir de grosses cochenilles de 2 cm de long. L'aje est une sécrétion jaune, graisseuse et imperméabilisante produite par Llaveia axin (Llave). Il servait aussi de base au peintures (dont sur le visage). Poteries, bateaux, bois ou gourdes étaient imperméabilisés par de l'aje. Enfin, l'aje était aussi un remède contre la diarrhée et un analgésique contre la goutte. En altitude, il protégeait la peau des engelures et gerçures.
  • La manne qui aurait nourri les Hébreux lors de leur traversée du désert pourrait avoir été le miellat cristallisé d’une cochenille, pouvant être Trabutina mannipara (Hemprich & Ehrenberg, 1829), une Pseudococcine vivant sur le tamaris (Tamarix sp.) dans les montagnes du Sinaï (Il pourrait aussi s'agir de nostoc). Cette hypothèse est cependant controversée car la cochenille, étant un insecte, n'est pas un aliment autorisé à la consommation pour les Hébreux selon la Bible. [ref?]
  • Les aborigènes australiens mangent les galles d'eucalyptus et les apiomorphas qu'elles contiennent, comme friandises. En Asie du sud-est ce sont les Monophlébines (grosses cochenilles) qui sont consommées.

Taxonomie

Pulvinaria hydrangeae sur feuille de tilleul

Taxons inférieurs : familles :

  • Aclerididae
  • Asterolecaniidae
  • Beesoniidae
  • Carayonemidae
  • Cerococcidae
  • Coccidae
  • Conchaspididae
  • Dactylopiidae
  • Diaspididae
  • Electrococcidae
  • Eriococcidae
  • Grimaldiellidae
  • Halimococcidae
  • Inkaidae
  • Jersicoccidae
  • Kermesidae
  • Kerriidae
  • Kukaspididae
  • Labiococcidae
  • Lecanodiaspididae
  • Margarodidae
  • Micrococcidae
  • Ortheziidae
  • Phenacoleachiidae
  • Phoenicococcidae
  • Pseudococcidae
  • Putoidae
  • Stictococcidae

Trois grands types de cochenilles

Celles qui ont un corps mou, sans bouclier protecteur.
Elles se protègent sous des filaments cireux

Pseudococcidés et Margarodidés :
Exemples :
Cochenille farineuse des serres (Pseudococcus adonidum)
Cochenille australienne (Icerya purchasi)

Celles qui ont un corps durci par imprégnation de cire ou de laque (lécanines, ou lécanies, de la famille des Lécanidés, autrefois) Maintenant les cochenilles de cette famille s'appelle les Coccidés

Exemples :
Cochenille du cornouiller (Parthenolecanium corni)
Cochenille du pêcher (Eulecanium persicae)
Cochenille des serres (Saissetia hemisphaerica)
Cochenille de l’olivier (Saissetia oleae)
Cochenille floconneuse de la vigne (Pulvinaria vitis)
Lécanie du chêne (Parthenolecanium quercifex)
Lécanie de Fletcher (Parthenolecanium fletcheri)
Lécanie de la vigne (Parthenolecanium corni)

Celles qui ont un corps mou, couvert d’un boulier protecteur cireux (Diaspididés) dont la forme rappellerait une minuscule coquille d’huître.

Exemples :
Pou de san José (Diaspidiotus perniciosus)
Cochenille des arbres fruitiers à pépins (Diaspidiotus piri et D. ostraeiformis)
Cochenille virgule du pommier (Lepidosaphes ulmi)
Cochenille du poirier (Epidiaspis leperii)
Pou de l’oranger (Chrysomphalus aonidum et C. dictyospermi)
Cochenille noire des agrumes (Parlatoria zizyphii), Cochenilles serpette des agrumes (Lepidosaphes citricola et L. gloweri)
Cochenille du mûrier (Pseudaulascaspis pentagona)

Exemples d'espèces

Famille Ortheziidae

  • Orthezia urticae (Linnaeus, 1758)

Famille Margarodidae

  • Guerriniella serratulae (Fabricius, 1775)
  • Icerya purchasi (Maskell, 1879)
  • Matsucoccus pini (Green, 1925)
  • Neomargarodes europaeus (Goidanich, 1969)
  • Porphyrophora italica (Goidanich, 1963)

Famille Pseudococcidae

  • Asphodelococcus asphodeli (Bodenheimer, 1927)
  • Balanococcus santilongoi (Mazzeo, 1996)
  • Chaetococcus phragmitis (Marchal, 1909)
  • Delottococcus euphorbiae (Ezzat & McConnell, 1956)
  • Dysmicoccus brevipes (Cockerell, 1893)
  • Dysmicoccus neobrevipes (Beardsley, 1959)
  • Dysmicoccus pietroi (Marotta, 1992)
  • Euripersia tomlini (Newstead, 1892)
  • Hypogeococcus pungens (Granara de Willink, 1981)
  • Nipaecoccus nipae (Maskell, 1893)
  • Peliococcus cycliger (Leonardi, 1908)
  • Peliococcus vivarensis Tranfaglia, 1981
  • Phenacoccus aceris (Signoret, 1875)
  • Phenacoccus graminicola (Leonardi, 1908)
  • Phenacoccus interruptus (Green, 1923 )
  • Phenacoccus madeirensis (Green, 1923 )
  • Phenacoccus mespili (Signoret, 1875)
  • Phenacoccus neohordei (Marotta, 1992)
  • Phenacoccus silvanae (Longo & Russo, 1989 )
  • Phenacoccus yerushalmi (Ben-Dov, 1985 )
  • Planococcus citri (Risso, 1813)
  • Planococcus ficus (Signoret, 1875)
  • Pseudococcus affinis (Maskell, 1894)
  • Pseudococcus calceolariae (Maskell, 1878)
  • Pseudococcus longispinus (Targioni Tozzetti, 1867)
  • Puto palinuri (Marotta e Tranfaglia, 1993)
  • Puto superbus (Leonardi, 1907)
  • Puto tauricus (Borchsenius, 1948)
  • Rhizoecus cacticans (Hambleton, 1946)
  • Rhizoecus falcifer (Kunckel d'Herculais, 1878)
  • Rhizoecus lelloi (Mazzeo, 1996 )
  • Spilococcus mammillariae (Bouché, 1844 )
  • Spinococcus multispinus (Siraiwa, 1939)
  • Trionymus perrisii (Signoret, 1875)
  • Trionymus tomlini (Green, 1925 )
  • Vryburgia rimariae (Tranfaglia, 1981)

Famille Eriococcidae

  • Acanthococcus araucariae (Maskell, 1879)
  • Acanthococcus cactearum (Leonardi, 1908)
  • Acanthococcus coccineus (Cockerell, 1894)
  • Acanthococcus cynodontis (Kiritchenko, 1940)
  • Acanthococcus devoniensis (Green, 1896)
  • Acanthococcus rosannae (Tranfaglia & Esposito, 1985)
  • Ovaticoccus agavium (Douglass, 1888)
  • Rhizococcus insignis (Newstead, 1891)

Famille Cryptococcidae

  • Cryptococcus fagisuga Lindinger, 1936

Famille Micrococcidae

  • Micrococcus silvestrii Leonardi, 1907

Famille Kermesidae

  • Kermes bacciformis (Leonardi, 1908)
  • Kermes gibbosus (Signoret, 1875)
  • Kermes roboris (Fourcroy, 1785)
  • Kermes vermilio (Planchon, 1864)
  • Nidularia pulvinata (Planchon, 1864)

Famille Cerococcidae

  • Pollinia pollini (Costa, 1857)

Famille Coccidae

  • Ceroplastes rusci (Linnaeus, 1758)
  • Ceroplastes sinensis (Del Guercio, 1900 )
  • Coccus hesperidum (Linnaeus, 1758)
  • Coccus pseudomagnoliarum (Kuwana, 1914)
  • Eucalymnatus tessellatus (Signoret, 1873)
  • Eulecanium tiliae (Linnaeus, 1758)
  • Filippia follicularis (Targioni Tozzetti, 1867)
  • Lecanopsis formicarum (Newstead, 1893)
  • Lichtensia viburni (Signoret, 1873)
  • Nemolecanium graniformis (Wünn, 1921)
  • Parthenolecanium corni (Bouché, 1844)
  • Parthenolecanium persicae (Fabricius, 1776)
  • Parthenolecanium rufulum (Cockerell, 1903)
  • Pulvinara mesembryanthemi (Vallot, 1830)
  • Pulvinaria floccifera (Westwood, 1870)
  • Pulvinaria vitis (Linnaeus, 1758)
  • Rhizopulvinaria grassei (Balachowsky, 1936)
  • Saissetia coffeae (Walker, 1852)
  • Saissetia oleae (Olivier, 1791)
  • Scythia aetnensis Russo & Longo, 1990

Famille Aclerididae

  • Aclerda berlesei (Buffa, 1897 )

Famille Asterolecaniidae

  • Asterodiaspis bella (Russell, 1941)
  • Asterodiaspis ilicicola (Targioni Tozzetti, 1888)
  • Asterodiaspis roboris (Russell, 1941)
  • Bambusaspis bambusae (Boisduval, 1869)
  • Planchonia zanthenes (Russell, 1941)

Famille Phoenicococcidae

  • Phoenicococcus marlatti Cockerell, 1899

Famille Diaspididae

  • Abgrallaspis cyanophylli (Signoret, 1869)
  • Acanthomytilus intermittens (Hall, 1924)
  • Acanthomytilus sacchari (Hall, 1923)
  • Aonidia lauri (Bouché, 1833)
  • Aonidiella aurantii (Maskell, 1879)
  • Aonidiella taxus (Leonardi, 1906)
  • Aspidiotus hedericola (Leonardi, 1920 )
  • Aspidiotus nerii (Bouché, 1933)
  • Aspidiotus spinosus (Comstock, 1883 )
  • Aulacaspis rosae (Bouché, 1833)
  • Carulaspis carueli (Signoret, 1869)
  • Carulaspis juniperi (Bouché, 1851)
  • Carulaspis silvestrii Lupo, 1966
  • Carulaspis visci (Schrank, 1781)
  • Chionaspis pinifoliae (Fitch…)
  • Chionaspis salicis (Linnaeus, 1758)
  • Chrysomphalus aonidum (Linnaeus, 1758)
  • Chrysomphalus dictyospermi (Morgan, 1889)
  • Diaspidiotus distinctus (Leonardi, 1900)
  • Diaspidiotus osborni (Newell & Cockerell, 1898)
  • Diaspidiotus viticola (Leonardi, 1913)
  • Diaspis boisduvalii (Signoret, 1869)
  • Diaspis bromeliae (Kerner, 1778)
  • Diaspis coccois (Lichtenstein, 1882 )
  • Diaspis echinocacti (Bouché, 1833)
  • Duplachionaspis berlesei (Leonardi, 1898)
  • Duplachionaspis sicula (Lupo, 1938)
  • Dynaspidiotus britannicus (Newstead, 1898)
  • Epidiaspis gennadii (Leonardi, 1898)
  • Epidiaspis leperii (Signoret, 1869)
  • Evallaspis ampelodesmae (Newstead, 1897)
  • Fiorinia fioriniae (Targioni Tozzetti, 1867)
  • Furchadaspis zamiae (Morgan, 1890)
  • Gonaspidiotus minimus (Leonardi, 1896)
  • Hemiberlesia lataniae (Signoret, 1869)
  • Hemiberlesia rapax (Comstock, 1881)
  • Howardia biclavis (Comstock, 1883)
  • Ischnaspis longirostris (Signoret, 1882)
  • Lepidosaphes beckii (Newmann, 1869)
  • Lepidosaphes conchiformis (Gmelin, 1789)
  • Lepidosaphes destefanii (Leonardi, 1907 )
  • Lepidosaphes gloverii (Packard, 1869)
  • Lepidosaphes granati Koronéos, 1934
  • Lepidosaphes newsteadi (Sulc, 1895)
  • Lepidosaphes pinnaeformis (Bouché, 1851)
  • Lepidosaphes ulmi (Linnaeus, 1758)
  • Leucaspis loewi (Colvée, 1882 )
  • Leucaspis pini (Hartig, 1839)
  • Leucaspis pusilla( Loew, 1883)
  • Leucaspis riccae Targioni Tozzetti, 1881
  • Lindingaspis rossi (Maskell, 1891)
  • Melanaspis inopinata (Leonardi, 1913)
  • Mercetaspis sphaerocarpae Gomez Menor, 1927
  • Nuculaspis abietis (Schrank, 1776)
  • Pallulaspis retamae (Hall, 1926)
  • Parlatoria camelliae (Comstock, 1883 )
  • Parlatoria oleae (Colvée, 1880)
  • Parlatoria pergandii (Comstock, 1881 )
  • Parlatoria ziziphi (Lucas, 1853)
  • Pinnaspis aspidistrae (Signoret, 1869)
  • Pinnaspis strachani (Cooley, 1899)
  • Pseudaulacaspis cockerelli (Cooley, 1897)
  • Pseudaulacaspis pentagona (Targioni Tozzetti, 1886)
  • Quadraspidiotus cecconii (Leonardi, 1908)
  • Quadraspidiotus lenticularis (Lindinger, 1912)
  • Quadraspidiotus ostraeformis (Curtis, 1843)
  • Diaspidiotus perniciosus (Comstock, 1881)
  • Quadraspidiotus zonatus (Frauenfeld, 1868)
  • Rungaspis capparidis (Bodenheimer, 1929)
  • Saharaspis ceardi (Balachowsky, 1928)
  • Suturaspis archangelskyae (Lindinger, 1929)
  • Targionia nigra (Signoret, 1870)
  • Targionia vitis (Signoret, 1876)
  • Unaspis euonymi (Comstock, 1881)

Notes et références

  1. (en)Welcome to ScaleNet. sur www.sel.barc.usda.gov. Consulté le 29 juillet 2010.
  2. a, b, c, d, e, f, g, h, i, j, k, l, m et n Imre Foldi (pdt de l'OPIE); Les cochenilles - 1ère partie ; Insectes 3 n ° 129 - 2003 (2)
  3. a et b (en)Scale families sur www.sel.barc.usda.gov. Consulté le 29 juillet 2010.
  4. Jactel H., Menassieu P., Ceria A., Burban C., Regad J., Normand S., & Carcreff E. 1998. Une pullulation de la cochenille Matsucoccus feytaudi provoque un début de dépérissement du Pin maritime en Corse. Revue forestière française, vol. L, n°1, 33-45.
  5. Kreiter P. & Dijoux L., 1998. - La Cochenille blanche du mûrier en verger de pêcher. Un exemple de lutte dans les Alpes-Maritimes. La Défense des Végétaux, 501, 36-40.
  6. Jourdheuil P. Grison P. Fraval A., 1999. – La lutte biologique : un aperçu historique. Dossier de l’environment de l’INRA, 19, 213-233. En ligne
  7. nhm.ac.uk
  8. Les cochenilles (2) - par Imre Foldi - parue dans Insectes n°130
  9. Cardon D., & Chatenet G., 1990. – Guide des teintures naturelles, Plantes-Lichens, Champignons, Mollusques et Insectes. Delachaux et Niestlé, 400 pp.

Voir aussi

Articles connexes

Liens externes

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Bibliographie

  • Foldi I., 1988.– Les Cochenilles : des insectes mal connus mais passionnants. Insectes 70, 4-7.

• Foldi I., 1991. – The wax glands in scale insects : comparative ultrastructure, secretion, function and evolution (Homoptera: Coccoidea). Annales de la Société Entomologique de France (N.S.), 27, 163-188. • Foldi I., 1997. – Defense strategies in scale insects: phylogenetic inference and volutionary scenarios (Hemiptera : Coccoidea). In : Grandcolas, P. (ed), The Origin of Biodiversity in Insects  : Phylogenetic Tests of Evolutionary Scenarios. Mémoires du Muséum national d'Histoire naturelle, 173, 203-230. • Foldi I., 2001. – Liste des Cochenilles de France (Hemiptera, Coccoidea). Bulletin de la Société entomologique de France, 106, 303-308. • Gullan P.J. & Kosztarab M., 1997. – Adaptation in Scale Insects. Annual Reviews of Entomology, 42, 23-50.



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